提高微模板对单细胞分析的鲁棒性

ty10086 提交于 周四, 08/26/2021 - 12:52
文章英文标题
Improving the robustness of microstencils for single-cell analysis
正文
鉴于细胞表型在群体水平上的高度变异,越来越多的研究人员转向单细胞分析,以更好地理解细胞和疾病功能。然而,对单个细胞的处理和操纵仍然具有挑战性和昂贵性。例如,一种叫做“微接触印刷”的方法将蛋白质印在培养表面,但这个过程复杂、缓慢且效率低下。作为一种替代方法,新的文章提出了一种制备结构稳健的单细胞分析用微模板的新技术,该技术具有成本低、通用性强、重复性好等优点。由聚合物聚二甲基硅氧烷( PDMS )构筑的微模板在几个月内可重复使用数十次,磨损最小。虽然微模板图案的制作并不新鲜,但由于模板的易碎性,这种方法已经被淘汰,有利于微接触印刷。微纤膜的厚度只有30 ~ 40微米。为了增加膜强度,作者在花纹截面周围画了毫米厚的PDMS边界。因此,在保持模板区域很薄的同时,膜被加强。为了验证这种方法的有效性,作者选择性地将一个疏水的培养皿——细胞通常不会粘附在这个培养皿上——通过微模板接触氧等离子体。这一过程创造了与任何期望形状和尺寸的模板孔相对应的亲水性岛屿。细胞被接种到这些岛屿,并停留在其边界内。作者希望其他研究者将采用这种简单可靠的方法对模式细胞进行广泛的未来研究。资料来源:Khadija Zaidi和Nitin Agrawal,Biomicrofluidics ( 2018 )的\"基于Microstencil的空间固定单个细胞分析\"。文章可在https://doi.org/10.1063/1.5061922.访问
文章内容(英文)
Given the high variation of cell phenotypes at the population level, a growing number of researchers have turned to single-cell analysis to better understand cell and disease functions. However, handling and manipulation of individual cells remains challenging and expensive. For instance, a method called “microcontact printing” stamps proteins onto the culture surfaces, but the process is complex, slow and inefficient.As an alternative approach, a new article presents a novel technique to fabricate structurally robust microstencils for single-cell analysis that is cost-effective, versatile and reproducible. The microstencils, constructed out of the polymer polydimethylsiloxane (PDMS), can be reused dozens of times over several months with minimal wear.While microstencil patterning is not new, the method has been eschewed in favor of microcontact printing due to the fragility of stencils that would often break. The thickness of a microstencil membrane is only 30 to 40 microns. To increase membrane strength, the authors painted a millimeter-thick border of PDMS around the patterned section. Thus, the membrane is reinforced while keeping the stencil area very thin. To validate the effectiveness of this approach, the authors selectively exposed a hydrophobic petri dish — to which cells do not normally adhere — to oxygen plasma through the microstencil. This process created hydrophilic islands corresponding to the stencil holes of any desired shape and dimensions. Cells were seeded to these islands and stayed within their boundaries.The authors hope that other researchers will adopt this simple and reliable approach to pattern cells for a wide range of future studies.Source: “Microstencil-based spatial immobilization of individual cells for single cell analysis,” by Khadija Zaidi and Nitin Agrawal, Biomicrofluidics (2018). The article can be accessed at https://doi.org/10.1063/1.5061922.
来源出处
Journal|[J]ScilightVolume 2018, Issue 48. 2018. PP 480004
DOI
https://doi.org/10.1063/1.5082923

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